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產(chǎn)品信息
產(chǎn)品名稱 |
產(chǎn)品編號 |
規(guī)格 |
高純度質(zhì)粒DNA小量提取試劑盒 |
M0k942132 |
100T |
產(chǎn)品簡介
本試劑盒采用改良的SDS-堿裂解法,優(yōu)化的裂解液可以使得離心吸附柱在高鹽狀態(tài)下特異性地結(jié)合溶液中的DNA,結(jié)合先進的硅膠膜吸附技術(shù),可達到快速純化質(zhì)粒DNA的目的。適用于從1-5 mL的細菌培養(yǎng)物中提取多至25 μg高純度的質(zhì)粒DNA。本試劑盒可去除雜質(zhì)蛋白及細胞中其他有機化合物。質(zhì)粒提取得率和質(zhì)量與宿主菌的種類和培養(yǎng)條件,細胞的裂解,質(zhì)??截悢?shù),質(zhì)粒的穩(wěn)定性,抗生素等因素有關(guān)。溶液包含指示劑,通過其顏色的變化,指示重懸、裂解、中和是否完全,從而保證質(zhì)粒提取的質(zhì)量,實現(xiàn)可視化的操作流程。使用本試劑盒提取的質(zhì)粒DNA可適用于轉(zhuǎn)染多種細胞及各種常規(guī)操作,包括酶切、PCR、測序、連接、轉(zhuǎn)化、文庫篩選、體外翻譯等。
儲存與運輸
常溫運輸;常溫干燥保存,有效期12個月。其中RNase A在室溫可穩(wěn)定保存12個月以上,加入到Buffer S1 (Red)中以后4℃保存。
使用前須知(請仔細閱讀)
1. 使用前請先檢查Buffer BL、Buffer S2、S3、PD是否出現(xiàn)渾濁,如有混濁現(xiàn)象,可在37℃水浴中加熱數(shù)分鐘,即可恢復澄清。
2. Buffer S1在使用前先加入全部的RNase A并混勻,置于2-8℃保存。
3. Buffer PW使用前請先檢查是否加入指定量的無水乙醇。
4. 柱平衡步驟中Buffer BL的加入能夠改善吸附柱的吸附能力并提高吸附柱的均一性和穩(wěn)定性,消除高溫、潮濕或其他不良環(huán)境因素對吸附柱造成的影響。
操作步驟
1. (可選步驟)柱平衡:將吸附柱(Bind DNA Mini Columns)置入收集管(Collection Tubes)中,向吸附柱中加入500 μL溶液Buffer BL,10,000 g離心1 min,去除收集管中的廢液,將吸附柱重新放回收集管中(請使用當天處理過的柱子);
2. 細菌收集:取1-5 mL過夜培養(yǎng)的新鮮菌液加入離心管中,10,000 g離心1 min,盡量吸除上清(菌液較多時可以通過多次離心將菌體沉淀收集到一個離心管中);
3. 重懸:向留有菌體沉淀的離心管中加入250 μL溶液Buffer S1(使用前請先檢查瓶中是否已加入RNase A),使用移液器或渦旋振蕩器徹底重懸菌體沉淀,混勻后的溶液為渾濁的紅色,室溫靜置5 min(注意:如果有未徹底混勻的菌塊,會影響裂解,導致提取量和純度偏低);
4. 裂解:向離心管中加入250 μL溶液Buffer S2,溫和地上下翻轉(zhuǎn)6-8次使菌體充分裂解(注意:溫和混合,不要劇烈震蕩;此時菌液應(yīng)變得清亮粘稠,如果未變清亮,可能由于菌體過多,裂解不徹底,應(yīng)減少菌體量。添加Buffer S2徹底混勻后,溶液顏色為澄清的紫色;如紫色中混雜有渾濁的紅色,則說明裂解不充分,繼續(xù)混勻直至溶液顏色完全變?yōu)槌吻宓淖仙?;裂解建議室溫不超過5 min);
5. 中和:向離心管中加入350 μL溶液Buffer S3,立即快速地上下顛倒混勻6-8次,充分混勻,此時將出現(xiàn)絮狀沉淀,13,000 g離心10-15 min(注意:加入溶液Buffer S3后應(yīng)立即混合,上清中含有少量微小白色沉淀對后續(xù)實驗沒有影響;如上清中存在大量微小白色沉淀,可再次離心后取上清;添加Buffer S3徹底混勻后,溶液為澄清的黃色,如在黃色中混有紫色,則說明復性不充分,繼續(xù)混勻至溶液顏色完全變?yōu)槌吻宓狞S色);將收集的上清液轉(zhuǎn)移至吸附柱中,注意盡量不要吸取沉淀,10,000 g離心1 min,棄去收集管中的廢液,將吸附柱放入收集管中;
6. 向吸附柱中加入500 μL溶液Buffer PD,10,000 g離心1 min,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱放入收集管中;
7. 向吸附柱中加入700 μL溶液Buffer PW(使用前請先檢查是否已加入無水乙醇),10,000 g離心1 min,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱放入收集管中(注意:如果回收的DNA是用于鹽敏感的實驗,例如平末端連接實驗或直接測序,建議Buffer PW加入后靜置2-5 min再離心);
8. 重復操作步驟7;
9. 將吸附柱放入收集管中,10,000 g離心2 min,盡量除去殘留的液體;將吸附柱置于室溫放置5 min,徹底晾干(注意:漂洗液中乙醇的殘留會影響后續(xù)的酶切、PCR等實驗);
10. 將吸附柱放入一個干凈離心管中,向吸附中的膜中間位置懸空滴加50~100μL Elution Buffer或ddH2O(60-65℃預熱Elution Buffer或ddH2O后再使用效果更好),室溫放置2 min,10,000 g離心2 min,收集DNA溶液(注意:洗脫液的體積不應(yīng)少于50 μL,體積過少會影響回收的效率。為了提高DNA的回收量,可將離心得到的溶液重新加回離心吸附柱中,室溫放置2 min,10,000 g離心2 min,將DNA溶液收集到離心管中。洗脫液的pH值對于洗脫效率有較大影響。若后續(xù)做測序,建議使用ddH2O做洗脫液,并保證其pH值在7.0-8.5范圍內(nèi),pH值低于7.0會降低洗脫效率;DNA產(chǎn)物應(yīng)保存在-20℃,以防DNA降解)。
注意事項
1. 提取的質(zhì)粒量與細菌培養(yǎng)濃度、質(zhì)??截悢?shù)等因素有關(guān)。如果所提質(zhì)粒為低拷貝質(zhì)?;虼笥?0 kb的大質(zhì)粒,應(yīng)加大菌體使用量,使用5-10 mL過夜培養(yǎng)物,同時按照比例增加Buffer S1、S2、S3的用量,Elution Buffer應(yīng)在60-65℃水浴預熱,在吸附和洗脫時可以適當?shù)难娱L時間,以提取效率。其它步驟相同。
2. 各溶液使用后請及時將蓋子擰緊,防止溶劑揮發(fā)。
3. 操作時請穿實驗服,并佩戴一次性手套。
產(chǎn)品僅供科研用途,不用于臨床診斷!
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