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DAB (SA-HRP) Tunel Cell Apoptosis Detection Kit

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貨號：
FKU0175
產(chǎn)品規格：
50T
購買(mǎi)數量：
產(chǎn)品詳情 操作說(shuō)明 注意事項

產(chǎn)品描述

細胞凋亡中染色體DNA的斷裂是個(gè)漸進(jìn)的階段性過(guò)程。染色體DNA首先在內源性的核酸水解酶的作用下降解為50-300 kb的大片段，然后大約30%的染色體DNA在Ca2+和Mg2+依賴(lài)的核酸內切酶作用下，在核小體單位之間被隨機切斷，形成180-200 bp核小體DNA多聚體。因此在細胞凋亡晚期，DNA會(huì )被降解為180-200 bp的片段，斷裂的基因組DNA上暴露出大量的3'-OH末端。末端脫氧核糖核苷酸轉移酶（Terminal Deoxynucleotidyl Transferase, TdT）是一種不依賴(lài)于模板的DNA聚合酶，可以催化脫氧核苷酸結合到斷裂的DNA分子3'-OH末端。因此TUNEL (TdT mediated dUTP Nick End Labeling)細胞凋亡檢測試劑盒可以用來(lái)檢測組織細胞在凋亡晚期過(guò)程中細胞核DNA的斷裂情況。其原理是在TdT酶的作用下，在基因組DNA斷裂時(shí)暴露出的3′-OH末端摻入CF640-dUTP，從而可以用熒光顯微鏡或流式細胞儀檢測（CF640激發(fā)642 nm，發(fā)射662 nm）。本試劑盒應用范圍廣，適用于石蠟組織切片，冰凍組織切片、細胞爬片、細胞涂片等的細胞凋亡檢測。


儲存與運輸

冰袋（wet ice）運輸；

本試劑盒儲存在-20℃，CF488-dUTP Labeling Mix需避光儲存于-20℃，有效期12個(gè)月。


實(shí)驗前準備

1. PBS磷酸鹽緩沖液；

2. 固定液：溶于PBS的4%多聚甲醛，pH 7.4；

3. 破膜液：溶于0.1%檸檬酸鈉的0.1% Triton X-100；

4. 配制含2% Triton X-100的PBS；配制含1% Triton X-100及5 mg/mL BSA的PBS；

5. 如需染核，需自備DAPI（2 μg/mL）或PI（1 μg/mL）；

6. 如需陽(yáng)性對照實(shí)驗，需自備DNase I；

7. 如果用流式細胞儀，自備PI染液和RNase A（DNase free）；

8. 操作時(shí)請穿實(shí)驗服，佩戴一次性手套。

操作步驟

一、樣品準備

A. 石蠟包埋組織切片

1. 室溫下將石蠟組織切片放入二甲苯中浸泡5-10 min，重復2-3次；然后無(wú)水乙醇浸泡5 min，重復2次；最后用梯度乙醇（85%、75%、雙蒸水）各浸泡1次，每次5 min；

2. 用PBS輕輕潤洗切片，并去掉樣本周?chē)嘤嘁后w，使用組化筆沿組織外圍輪廓畫(huà)一個(gè)與組織間隔2-3 mm的小圈，便于下游通透性處理和平衡標記操作，在實(shí)驗過(guò)程中，切勿讓樣品干燥，處理好的樣本放在濕盒中保持樣本的濕潤；

3. 配制Proteinase K工作液：按1：9的比例，用PBS作為稀釋液來(lái)稀釋Proteinase K（200 μg/mL）原液，使其終濃度為20 μg/mL；

4. 每個(gè)樣本上滴加100 μL上述Proteinase K工作液，使其被全部覆蓋，37℃孵育20 min；

（注：Proteinase K處理主要有助于組織和細胞后續步驟的染色試劑通透，其孵育時(shí)間過(guò)長(cháng)過(guò)短都會(huì )影響后續標記效率，為得到更好的結果，可以?xún)?yōu)化Proteinase K孵育的時(shí)間）

5. 用PBS溶液浸潤清洗樣本3次，每次5 min（Proteinase K需洗滌干凈，否則會(huì )干擾后續的標記反應）。處理后的樣本放在濕盒中保持樣本的濕潤；

6. （可選步驟）去掉樣本上多余的液體，將適量破膜液滴加到組織上，充分浸潤組織，室溫處理20 min；破膜處理完成后同樣的用PBS溶液潤洗樣本3次，每次5 min；處理后的樣本放在濕盒中保持樣本的濕潤。

B. 組織冰凍切片

1. 將玻片浸沒(méi)在4%多聚甲醛溶液（溶于PBS）中固定，室溫下孵育10-15 min；

2. 片子從固定液中取出后，通風(fēng)櫥中自然晾干；

3. 將玻片放入純水或PBS中潤洗，去掉玻片上殘存的固定液；

4. 用組化筆沿著(zhù)組織外圍輪廓畫(huà)一個(gè)與組織間隔2-3 mm的小圈，便于下游通透性處理和平衡標記操作；在實(shí)驗過(guò)程中，切勿讓樣品干燥，處理好的樣本放在濕盒中保持樣本的濕潤；

5. 配制Proteinase K工作液：按1：9的比例，用PBS作為稀釋液來(lái)稀釋Proteinase K（200 μg/mL）原液，使其終濃度為20 μg/mL；

6. 每個(gè)樣本上滴加100 μL上述Proteinase K工作液，使其被全部覆蓋，室溫孵育10 min；

（注：Proteinase K處理主要有助于組織和細胞后續步驟的染色試劑通透。其孵育時(shí)間過(guò)長(cháng)過(guò)短都會(huì )影響后續標記效率；未得到更好的結果，可能需要優(yōu)化Proteinase K孵育的時(shí)間）

7. 用PBS溶液潤洗樣本2-3次，去掉多余液體（Proteinase K需洗滌干凈，否則會(huì )干擾后續的標記反應），處理后的樣本放在濕盒中保持樣本的濕潤；

8. （可選步驟）將適量破膜液滴加到組織上，充分浸潤組織，室溫處理20 min，破膜處理完成后同樣的用PBS溶液潤洗樣本，去掉多余液體，處理后的樣本放在濕盒中保持樣本的濕潤。

C. 細胞爬片

1. 在Lab-Tek載玻片小室（Chamber Slides）上培養貼壁細胞，在凋亡誘導處理之后，用PBS輕輕潤洗2遍載玻片；

2. 向每個(gè)載玻片小室中加入適量的4%多聚甲醛溶液（溶于PBS）固定，室溫下孵育20 min；

3. 去掉固定液，加入PBS清洗3次，每次5 min；

4. 每個(gè)樣本浸于破膜液中，室溫孵育5 min進(jìn)行通透處理；

5. 在盛有PBS溶液的敞口燒杯中浸沒(méi)清洗樣本2-3次；

6. 輕輕去掉多余液體，并用濾紙小心吸干載玻片上樣本周?chē)囊后w。處理后的樣本放在濕盒中保持樣本的濕潤。

D. 細胞涂片

1. 以約2×107個(gè)細胞/mL的濃度將細胞重懸于PBS中，吸取50-100 μL細胞懸液滴于防脫玻片上，使用一片潔凈的載玻片輕柔涂開(kāi)細胞懸液；

2. 將玻片浸入裝有4%新鮮配制于PBS中的多聚甲醛的染色缸中，固定細胞，在4℃放置25 min；

3. 將玻片浸入PBS中，室溫放置5 min浸洗，重復一次；

4. 輕輕去掉多余液體，并用濾紙小心吸干玻片上樣本周?chē)嘤嗟囊后w，用組化筆沿著(zhù)細胞外圍輪廓畫(huà)一個(gè)小圈，便于下游透性處理和平衡標記操作，在實(shí)驗過(guò)程中，切勿讓樣品干燥；

5. 每個(gè)樣本浸于破膜液中，室溫孵育5 min進(jìn)行通透處理；

6. 在盛有PBS溶液的敞口燒杯中浸沒(méi)清洗樣本2-3次；

7. 輕輕去掉多余液體，并用濾紙小心吸干載玻片上樣本周?chē)囊后w。處理后的樣本放在濕盒中保持樣本的濕潤。

二、DNase I處理陽(yáng)性對照實(shí)驗（可選步驟）

在樣本通透處理后，用DNase I處理樣本來(lái)準備陽(yáng)性對照。

1. 將100 μL 1×DNase I Buffer（配制方法：取10 μL 10×DNase I Buffer，然后加入90 μL去離子水混勻）滴加到已通透的樣本上，室溫孵育5 min；

2. 輕輕去掉多余液體，加入100 μL含有DNase I（20 U/mL）的工作液（配制方法：取10 μL 10×DNase I Buffer，然后加入2 μL DNase I，再加入88 μL去離子水混勻），室溫孵育10 min；

3. 輕輕去掉多余的液體，并將載玻片在裝有PBS的染色缸中徹底洗3-4次。

(注：陽(yáng)性對照載玻片必須使用單獨的染色缸，否則陽(yáng)性對照載玻片上殘留的DNase I可能會(huì )在實(shí)驗載玻片上引入高背景)


三、標記與檢測

1. 平衡：每個(gè)樣本滴加50 μL Equilibration Buffer使其全部覆蓋待檢樣本區域，室溫孵育10 min；

2. 標記液配制：在冰上解凍CF488-dUTP Labeling Mix和Equilibration Buffer，并按照Recombinant TdT enzyme：CF488-dUTP Labeling Mix：Equilibration Buffer=1 μL：5 μL：50 μL（1：5：50）比例混合足夠用于所有實(shí)驗的TdT孵育緩沖液，具體實(shí)驗使用試劑的體積可以根據玻片的大小進(jìn)行適當等比例調整；

3. 陰性對照體系：準備一份不含Recombinant TdT enzyme的對照TdT孵育緩沖液，用ddH2O替代；

4. 標記：盡量去掉平衡的Equilibration Buffer，然后在每份組織樣本上加入56 μL TdT孵育緩沖液，在37℃孵育1 h；注意不能干片，載玻片要避光；

5. 立即用PBS潤洗組織樣本，清洗4次，每次5 min；

6. 用濾紙輕輕擦掉樣本周?chē)腜BS溶液；

7. 核染色：樣本在染色缸中染色，在黑暗中將載玻片浸入裝有DAPI溶液（用PBS新鮮配制并稀釋?zhuān)┑娜旧?，室溫放? min；

8. 封片：樣本染色完成后，用PBS清洗組織樣本3次，每次5 min，然后輕輕去掉多余液體，滴加抗熒光淬滅封片劑封片；

9. 鏡檢：立即在熒光顯微鏡下分析樣本，載玻片注意避光，DAPI能將凋亡和未凋亡的細胞都染成藍色，只在凋亡的細胞核中才有CF488-dUTP摻入而定位的綠色熒光。

四、利用流式細胞術(shù)檢測懸浮細胞

1. 將待檢測細胞用PBS清洗兩次，4℃離心（500 g）然后重懸在500 μL PBS中；

2. 固定：向樣品中加入5 mL 1%用PBS配制的多聚甲醛溶液，固定細胞，冰上放置20 min；

3. 細胞在4℃，300 g離心10 min，去上清并用5 mL PBS重懸兩次，最后用500 μL PBS重懸細胞；

4. 通透：向樣品中加入5 mL冰上預冷的70%乙醇，-20℃孵育4 h，通透細胞；

（注：細胞也可用破膜液室溫5 min進(jìn)行通透）

5. 細胞用300 g離心10 min后用5 mL PBS重懸，再次離心后用1 mL PBS 重懸；

6. 平衡：轉移約2×106個(gè)細胞至1.5 mL的微量離心管，300 g離心10 min，去上清，并用80 μL Equilibration Buffer重懸，室溫孵育5 min；

7. 標記液配制：在冰上解凍CF488-dUTP Labeling Mix和Equilibration Buffer，并按照Recombinant TdT enzyme：CF488-dUTP Labeling Mix：Equilibration Buffer=1 μL：5 μL：50 μL（1：5：50）比例混合足夠用于所有實(shí)驗和可選陽(yáng)性對照反應的TdT孵育緩沖液；

8. 標記：細胞用300 g離心10 min，去上清將沉淀重懸在56 μL TdT孵育緩沖液中，37℃孵育1 h，避光。每隔15 min用微量移液器輕輕重懸細胞；

9. 反應完成后加入1 mL 20 mM EDTA終止反應，用微量移液器輕柔混勻；

10. 300 g離心10 min，去上清并將沉淀重懸在1 mL破膜液中，其中含5 mg/mL BSA，重復洗2次；

11. 核染色：300 g離心10 min，去上清并將細胞沉淀重懸在0.5 mL DAPI溶液中，其中包含250 μg無(wú)DNA酶的RNase A，在黑暗中室溫孵育細胞30 min；

12. 上機檢測：流式細胞儀分析細胞，DAPI能將凋亡和未凋亡的細胞均染成藍色，只在凋亡的細胞核中才有CF488-dUTP摻入而定位的綠色熒光。

五、實(shí)驗流程簡(jiǎn)圖



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